Повреждение древесины в морской среде представляет собой сложный процесс, имеющий, в первую очередь, отношение к деятельности морских древоточцев в незащищенной и недолговечной древесине. Морские микроорганизмы как агенты повреждения играют меньшую роль, их'активность связана с различными формами поверхностного разрушения древесины. Считается, что наличие микроорганизмов на древесине, размягчение ее в результате их деятельности являются необходимыми условиями для последующего поселения древоточцев и их разрушительной деятельности 15]. И действительно, в отсутствии беспозвоночных животных происходит медленное разрушение поверхностных структурных элементов древесины в результате деятельности лигнолитических бактерий и грибов.

Рассмотрим данные, полученные при исследованиях под микроскопом, в том числе с использованием электронного сканирующего микроскопа, касающиеся различных форм разрушения стенок клетки древесины бактериями и грибами. В качестве тест-организмов были использованы актиномицеты, морской базидиомицет — Nia vibrissa морской аскомицет — Halosphaeria mediosetigera.

Типы разложения стенки клетки в результате деятельности актиномицетов изучали на образцах заболони сосны обыкновенной (Pinus sylvestris), погруженных в морскую воду разной солености. Образцы (размером 25 х 5 х 5 см), незащищенные и пропитанные промышленным защитным препаратом (арсенат меди и хрома) с поглощением 16, 32 и 48 кг/м³, прикрепляли полиэтиленовым тросом к бетонному грузилу и погружали в морскую воду. Лабораторное обследование проводили через 6, 12 и 24 мес. С образцов удаляли оброcт, промывали их стерильной, затем солоноватой и морской водой, инкубировали в пластмассовых камерах при температура 25° С в течение трех недель. Срезы обследовали под обычным и электронным сканирующим микроскопами.

Для изучения лигнолитической активности Nia vibrissa и Наlosphaeria mediosetigera использовали чистые культуры. Базидиокарпы Nia vibrissa, появившиеся на поверхности образцов дре-весины бука (Fagus sylvatica) после 18-месячного нахождения в моркой среде, инкубировали в лабораторных условиях в течение нескольких месяцев. Выделенные организмы культивировали в течение 24 недель на скошенной твердой среде, состоящей из морской воды, 0,1%-ного глюкозного агара с дрожжевым экстрактом; на поверхность среды помещали бальзовые (Ochroma lagopus Sw) полоски. Срезы древесины бальзы изучали под микроскопом.

С образцов древесины бука и сосны обыкновенной, находившихся в солоноватой воде градирни, выделили Н. mediosetigera. Культуру хранили на питательной среде, состоящей из морской воды и агара на отваре из кукурузной муки. Небольшие образцы (1 см³) заболони сосны обыкновенной и бука инокулировали суспензией мицелия гриба по методике, описанной ранее и немного модифицированной. Чтобы добиться активного разложения древесины, блоки инкубировали при температуре 220° С в течение 24 недель. Повреждения изучали под обычным оптическим и электронным сканирующим микроскопами.>

Срезы древесины, инокулированной культурами грибов, окрашивали пикроанилиновой синью и сафранином. Повреждения, вызванные актиномицетами, просматривали в поляризованном свете, a H. mediosetigera — под световым микроскопом. Препараты, предназначаемые для обследования под электронным микроскопом, фиксировали и сушили с соблюдением критической точки нагревания, чтобы избежать разрывов и деформации чувствительной структуры грибов. После сушки препараты устанавливали с помощью держателя электронного микроскопа, укрепляли коллоидным серебром и системой диодного распыления (Polaron E 5000) наносили слой золота толщиной 400 ангстрем. Шлейф от препаратов изучали с помощью стереоскана (Cambridge 2A) с ускоряющим напряжением 10 кВ.

Более детальное изучение процесса разрушения древесины в виде образований мягкой гнили, вызываемой Н. mediosetigera, проводилось с помощью замедленной микрографической киносъемки. Продольные срезы заболони сосны обыкновенной в герметичной камере обрызгивали стерильной морской водой. Посевной материал наносили на срезы древесины; в течение 11 сут на кинопленку снимали образование полостей мягкой гнили. Использование замедленной съемки позволило наблюдать при просмотре довольно медленный процесс роста грибов в убыстренном темпе.